商业和临床兽医实验室中的错误可分为：分析前、分析中或分析后。分析前错误在人类和兽医实验室中最为常见，通常与样本收集和处理中的疏忽有关。分析误差与仪器或方法的精密度、准确度、灵敏度和特异性有关，分析后误差可能与转录误差或对呈现数据的误解有关。
以下是导致分析前错误实验室结果的血液采集和样本处理的 5 个最常见原因：
01
非禁食患者
引起脂血的甘油三酯升高可能是潜在病理机制的结果。然而，脂血最常被视为非禁食患者的餐后变化（图 1和图2）。脂血会增加血清和/或血浆的混浊度，导致依赖光散射的血液学和生化分析（例如，折光法测定的总蛋白、血红蛋白和相关指标、胆红素）出现干扰。
10万元包助孕图1 未禁食狗的脂血。该样品冷藏过夜，使红细胞沉降，从而突出血浆的脂血性质（箭头）。
图2 脂血血清。如果使用间接电位测定法评估方法，过量的脂质会导致测量电解质的错误减少
根据所使用的分析方法，过量的脂质也会导致测量电解质的错误减少。许多分析仪采用间接电位测定法来确定血浆或血清中离子的电位。通过间接电位测定法测量的样品在分析前由分析仪稀释。在脂血症的情况下，添加稀释剂会导致测量的电解质浓度错误降低，因为增加的甘油三酯会导致称为体积置换的现象。许多床旁血气分析仪使用直接电位法，它不依赖于电解质的稀释测量，因此不会导致电解质浓度错误的降低。然而，避免与脂血相关错误的最简单方法是要求宠物主人在检查和计划采血前 8 至 12 小时禁食患者。
02
体外溶血
溶血（即红细胞溶解导致粉红色至红色血清 （图 3 ） 或血浆）分为病理性（即体内）或人为性（即体外）。体外溶血可能与创伤性样本收集、样本处理不当、极端温度和/或延迟处理有关。体外溶血降低红细胞浓度；然而，在没有体内溶血的情况下，血红蛋白浓度是准确的，因为许多分析仪的血红蛋白测量需要裂解所有红细胞，然后进行透光评估。红细胞浓度的人为降低也可能导致包括计算中的红细胞浓度（例如，计算的血细胞比容、平均红细胞血红蛋白浓度）的指数结果的改变。
图3 溶血血清
吸光度分光光度法用于测量许多生化分析物（例如胆红素、尿素氮、肌酸激酶、磷、胆固醇）的浓度，并测量穿过含有感兴趣的目标分析物（即酶促反应的产物） 的光量。然后将测量的波长与感兴趣物质的已知吸收光谱进行比较。游离血红蛋白吸收光，由于游离血红蛋白的存在会干扰检测，导致检测结果不准确。此外，标记的体外溶血可导致细胞内液中浓度较高的离子和分子的释放；还可能会遇到 ALT、AST、磷和钾（取决于物种）的虚假增加。
体外溶血可以通过使用无创伤性静脉穿刺、适当的患者约束和处理、合适的样本收集（例如，大口径针头）和恰当的样本处理（例如，与抗凝剂轻轻混合和及时分析）来预防。当样品分析延迟时，样品的冷藏是必要的，但样品不应直接放在冰上以减少溶血。
03
凝集样本
长时间采血、创伤性静脉穿刺和/或全血与抗凝剂混合不充分可能导致样本凝集。具有大凝块的样本有阻塞昂贵设备中的管道、进样器和过滤器的风险，不适合样本分析。为避免代价高昂的错误，建议在使用商业实验室或诊所台式分析仪进行分析之前寻找大凝块（图 4）。
图4 EDTA 管中的血凝块。建议在分析前目视观察大块凝块，但木棒涂抹器（如图所示）也是实现此目的的绝佳工具。
与血小板聚集相关的显微凝块或血小板团块（图 5），尤其是在猫中，可导致假性血小板减少（即假性血小板减少症）。此外，阻抗分析仪根据大小区分红细胞和血小板，这可能导致将小血小板团块（或大血小板）错误分类为红细胞。已经研究了几种防止或破坏血小板聚集的技术（例如涡旋混合、添加前列腺素）以避免这种影响；然而，任何方法的广泛使用——除了仔细收集和处理——并不明显，所有报告的血小板减少症都应通过血液涂片检查进行验证。
图5 狗血样中的大血小板团块（箭头和插图）
04
样本量不足
由于过量抗凝剂稀释或样本体积不足以满足运行要求的检测，所以收集微量的样本体积或使用过大的试管可能会导致不利的结果。采血管应填充至指定的管体积，这通常由细小的填充线指示（图 6）。
图6 提交给参考实验室的 EDTA 试管，其中包含的血液量不足以满足所选试管尺寸的要求。可以看到细微的填充线（箭头）
与血液相比，EDTA 抗凝剂是高渗的；然而，如果 EDTA 管被适当填充，张力的差异不会导致 CBC 结果的临床显著变化。当 EDTA 管未充分填充时，相对于全血的过量 EDTA 抗凝剂会促使细胞内水渗透运动至相对高渗的血浆/抗凝剂溶液，以试图平衡张力，导致红细胞收缩（creation）和从旋转的血细胞比容错误地减少了压实的细胞体积。当来自 EDTA 管的血液通过血液分析仪进行 CBC 时，分析仪将红细胞悬浮在与正常血浆等渗的稀释剂中。在含有过量 EDTA 的样品中，与收缩的 RBC 相比，稀释剂是低渗的（不是等渗的）；液体冲回细胞并重新获得体积。因此，从短样本计算出的血细胞比容是准确值。
合适的体积对于凝血测试尤其重要。大多数凝血曲线需要抗凝剂：全血比为 1:9 的柠檬酸血浆，在分析过程中通过添加钙来逆转抗凝作用。在填充不足的样本中，柠檬酸盐与全血的比率增加，导致凝血减少，导致凝血时间错误地延长。
如果预计样本量较低，则应向参考实验室索取所需分析物的最小样本量和推荐的样本处理技术。
05
延迟处理
理想情况下，血液和生化样本应在采集后尽快进行处理和分析。然而，这可能并不总是可行的，并且由于延迟处理可能会出现错误的结果。可能受到影响的血液学数据包括红细胞肿胀导致的平均红细胞体积 (MCV) 增加，从而导致 MCV 相关指标的进一步改变（例如，计算出的血细胞比容增加、平均细胞血红蛋白浓度降低）。这些变化最初通常在收集后 12 小时内观察到，并随着时间的推移继续增加。
与假毒性变化相适应的形态学变化（图 7）也可以在室温下收集后 4 小时、用冰袋保存后收集后 8 小时或在 39°F（ 4°C） 下收集后 24 小时在血液涂片中观察到。与长期储存相关的中性粒细胞形态变化的例子包括细胞质嗜碱性增加、细胞质空泡增加和 Dhle 小体的存在。目前的假设将这些变化的形成归因于随着长期储存而增加的细胞渗透性，导致以前可能不可见的结构染色。这些变化可能会被误解为真正的细胞质毒性变化，并可能具有临床意义；因此，在解释白细胞图时考虑这种变化很重要。
图7 来自提交给实验室进行术前 CBC 染色的健康狗的血液比较，该血液用相同的染色剂染色，但相隔 24 小时制备。采集后一小时内制备的单层血膜 ( A )。可以看到具有正常形态的节段性嗜中性粒细胞，其特征是深色浓缩染色质和明确的细胞核压痕。红细胞呈现正常形态，中央苍白，边缘光滑。冷藏24小时后制备的血涂片显示老化伪影（B）。中性粒细胞核凝聚较少，呈淡粉色，染色质更光滑（几乎透明化）；这可能与有毒变化相混淆。红细胞是圆的；有些不再表现出健康犬红细胞典型的中央苍白。
除了在白细胞中观察到的形态学变化外，在红细胞中也观察到与储存相关的形态学变化。特别重要的是从长期储存的红细胞表面去除外细胞血寄生虫（例如，猫支原体）；这可能会导致被忽视的寄生虫血症。也可以通过延迟处理观察到红细胞的增加。为了尽量减少与长期储存相关的人为引起的变化影响，强烈建议在采集后立即制备血涂片以供检查或提交给实验室。
对于生化测试，血液应凝集（15-30 分钟）并离心以从血清中分离细胞成分。与细胞成分分离后，应立即分析血清或冷藏长达 24 至 48 小时。血清的延迟分离和去除不可避免地导致化学成分的代谢，尤其是葡萄糖的减少。由于酶的活性和动力学，血清酶特别容易因延迟处理（ 24 小时）而导致错误结果。如果预计会出现延迟，安排调整或与参考实验室讨论所需分析物在冷冻血清中是否稳定会很有帮助。
06
结论
识别这些收集和抽样错误有助于防止出现错误结果，并在这些情况无法避免时帮助解释结果。将样本提交给参考实验室时，临床医生应传达已知的收集和处理错误，以帮助确保临床病理学家的准确解释。尽管本文未包含，但通过留置导管进行的样本采集，如果不按照之前描述的建议进行，可能会导致多个临床上显著的错误，例如 HCT 和其他液体稀释值错误降低，错误增加值（例如，葡萄糖，钾）继发于给药物质的污染，以及因过度吸入而继发的溶血。
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宠医说
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您好，根据您以上详细描述的，您目前的情况考虑应该是试管后出血，估计流产，可以卧床保胎，肌注黄体酮比较好的
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